دانلود مقاله انگلیسی چرا حسابداری دولتی و گزارش گری دولتی جدا هستند+ترجمه فارسی

اختصاصی از کوشا فایل دانلود مقاله انگلیسی چرا حسابداری دولتی و گزارش گری دولتی جدا هستند+ترجمه فارسی دانلود با لینک مستقیم و پرسرعت .

عنوان انگلیسی مقاله: why governmental accounting and financial

عنوان فارسی مقاله : چرا حسابداری دولتی و گزارش گری دولتی جدا هستند وبایستی متفاوت باشند.
فرمت فایل ترجمه شده: فایل Word ورد (Docx یا Doc) قابل ویرایش
تعداد صفحات فایل ترجمه شده: 31 صفحه متن انگلیسی به همراه 31 صفحه ترجمه فارسی

چکیده:

 WHY GOVERNMENTAL ACCOUNTING AND FINANCIAL
REPORTING IS—AND SHOULD BE—DIFFERENT  
Executive Summary
Governments are fundamentally different from for-profit business enterprises in several
important ways. They have different purposes, processes of generating revenues, stakeholders,
budgetary obligations, and propensity for longevity. These differences require separate
accounting and financial reporting standards in order to provide information to meet the needs of
stakeholders to assess government accountability and to make political, social, and economic
decisions. Although state and local governments in the United States have had separate standards
for over 100 years, occasionally the question is raised: Why can’t general purpose governments
(cities and counties, for example) simply apply the standards established for business
enterprises?1  The following questions and answers briefly address that issue, and the
accompanying paper and its appendixes provide an expanded discussion.

چرا حسابداری دولتی و گزارش گری دولتی جدا هستند وبایستی متفاوت باشند.
مقدمه و چهار چوب:
هر از گاهی ،این سوال مطرح می شود که چرا دولتهای ایالتی و محلی با اهداف عمومی (که در اینجا به آنها دولت گفته می شود )نمی توانند به راحتی از همان قوانینی که استاندارد های حسابداری برای شرکتهای تجاری در نظر گرفته است استفاده کنند. این مقاله ،توضیح می دهد که چرا دولتها نیازمند به استانداردهای جدا گانه است این مقاله همچنین برخی اختلافات بین استانداردهای دولتی که در طی بیست سال اخیر منتشر شده است را با همان استانداردهابرای شرکتها توضیح می دهد و همچنین توضیح می دهد که چرا فر آیند تنظیم استانداردها برای دولتها یک فرآیند در حال پیشرفت است .

پایان نامه بررسی تاثیرspp. Streptomyces جدا شده از خاک بر انحلال فسفات به منظور تولید کود زیستی فسفاته

اختصاصی از کوشا فایل پایان نامه بررسی تاثیرspp. Streptomyces جدا شده از خاک بر انحلال فسفات به منظور تولید کود زیستی فسفاته دانلود با لینک مستقیم و پرسرعت .

فرمت فایل : WORD (قابل ویرایش)

تعداد صفحات:152

پایان نامه برای دریافت درجه کارشناسی ارشد در رشته زیست شناسی  (M.A)
گرایش: میکروبیولوژی

فهرست مطالب:
عنوان                                                شماره صفحه
چکیده    1
فصل اول: کلیات تحقیق
1-1- مقدمه    3
1-2- روابط میکروارگانیسم با ریشه گیاهان    5
1-3- ترشحات ریشه    6
1-4- ریزوسفر    6
1-4-1 جمعیت میکروبی در ریزوسفر    7
1-4-2 عوامل مؤثر بر میکروارگانیسم ها در منطقه ریشه    8
1-5- اهمیت فسفر برای موجودات زنده    9
1-5-1 اشکال مختلف فسفر در طبیعت    9
1-5-2 تغییر و تبدیلات میکروبی فسفر در طبیعت    10
1-5-3 میکروارگانیسم های ریزوسفر و انحلال فسفات    12
1-5-4 مکانیسم های انحلال فسفر توسط میکروارگانیسم ها    12
1-6- اثر میکروارگانیسم های ریزوسفری بر گیاهان    14
1-7- کودهای کشاورزی    17
1-7-1 مقایسه انواع مختلف کودها    17
1-7-2 کود زیستی (Biofertilizer)    18
1-7-3 دسته بندی کودهای زیستی    19
1-7-4 اثرات سوء کودهای شیمیایی    19
1-7-5 دلایل اهمیت استفاده از کودهای زیستی    20
1-7-5-1 اهمیت کودهای بیولوژیک در سلامتی انسان    21
1-8- پیشینه استفاده از کودهای زیستی    22
1-9- جایگاه تولید کودهای زیستی در ایران و جهان    23
1-10- تولید کودهای زیستی    25
1-10-1 ویژگی ماده حامل    26
1-11- کودهای زیستی باکتریایی    27
1-12- کودهای زیستی فسفاته    28
1-13- لیگنیت    29
1-14- ویژگی های گیاه تربچه    30
1-14-1 خصوصیات گیاه شناسی    30
1-14-2 شرایط اقلیمی    31
1-14-3 کشت تربچه    33
1-15- اهداف تحقیق    34
1-16- فرضیه های تحقیق    34
فصل دوم: مروری بر ادبیات و پیشینه تحقیق
2-1- پیشینه تحقیق    36
2-2- هدف پژوهش    40
فصل سوم: روش اجرای تحقیق
3-1- تهیه کشت جوان و اطمینان از خالص بودن سویه نگهداری شده    42
3-1-1 رنگ آمیزی گرم    42
3-1-2 تکنیک کاور اسلیپ    42
3-2- پیش تست سویه مورد نظر برای اطمینان مجدد از انحلال فسفات در مقیاس آزمایشگاهی    43
3-3- ارزیابی به کارگیری افزودنی¬های لازم برای افزایش بقا سویه مورد نظر نسبت به تنش های محیطی مشتمل بر خشکی، شوری، دما، UV، pH    44
3-3-1 آماده سازی ماده حامل جهت تلقیح با باکتری    44
3-3-2 اعمال تنش های محیطی بر روی تیمارها    45
3-3-2-1 محیط کشت استارچ کازئین آگار    46
3-3-2-2 محلول  کدورت سنجی مک فارلند    46
3-3-2-3 محلول رقیق کننده    47
3-4- اعمال بهترین تیمار به گلدان ها و بررسی پایداری باکتری در ریزوسفر گیاه تربچه    47
3-4-1 روش کشت گلدانی تربچه    47
3-5- تاثیر سطوح مختلف تلقیح بر روی بقاء در سطح بذر تربچه    48
3-6- تاثیر سطوح مختلف تلقیح به کار برده شده در جذب فسفات توسط گیاه تربچه    48
3-6-1 اندازه گیری غلظت فسفر گیاه تربچه    48
3-6-2 روش ساخت معرف وانادات - مولیبدات    49
3-6-3 روش تهیه محلول های استاندارد فسفر و رسم منحنی استاندارد    49
3-7- بررسی بقاء باکتری در حامل‏های مختلف    50
3-8- نگهداری سویه مورد نظر برای مطالعات بعدی    50
3-8-1 محیط کشت نوترینت براث (Nutrient Broth)    51
3-8-2 محیط کشت TSA    51
3-9- نتایج آنالیز خاک گلدان قبل از آزمون و پس از آزمون    52
3-10-  تجزیه وتحلیل آماری داده ها    52
فصل چهارم: تجزیه و تحلیل داده‏ها
4-1- تهیه محیط کشت تازه و اطمینان از خالص بودن سویه نگهداری شده    54
4-2- پیش تست سویه مورد نظر برای اطمینان مجدد از انحلال فسفات    54
4-3- تاثیر مواد حامل بر بقاء سویه باکتری    55
4-3-1 تاثیر تنش دمایی بر افزایش بقاء باکتری در فرمول    55
4-3-2 تاثیر تنش شوری بر افزایش بقاء باکتری در فرمول    65
4-3-3 تاثیر تنش خشکی بر افزایش بقا باکتری در فرمول    73
4-3-4 تاثیر تنش PH بر افزایش بقا باکتری در فرمول    76
4-3-5 تاثیر تنش UV بر افزایش بقا باکتری در فرمول    84
4-4- اعمال بهترین تیمار به گلدان و بررسی پایداری باکتری در ریزوسفر گیاه    89
4-6- تاثیر سطوح مختلف تلقیح به کار برده شده در جذب فسفات توسط گیاه و نتایج آنالیز فسفات خاک گلدان‏ها و آنالیز فسفات گیاه    96
4-7- بررسی بقاء باکتری در حامل‏های مختلف    103
فصل پنجم: نتیجه گیری و پیشنهادات
5-1- نتیجه گیری    111
5-2- پیشنهادات    119
منابع و مآخذ    121
فهرست منابع فارسی    121
فهرست منابع انگلیسی    123
چکیده انگلیسی    126

 
فهرست جداول
عنوان                                                شماره صفحه
جدول 1-1- فهرستی از کودهای زیستی فسفاته داخل کشور    25
جدول 2-1- درجه حرارت های مورد نیاز گیاه تربچه    32
جدول 3-1- ترکیبات محیط کشت PVK    43
جدول 3-2- ترکیبات محیط کشت استارچ کازئین آگار    46
جدول 3-3- ترکیبات سرم فیزیولوژی    47
جدول 3-4-  ترکیبات محیط کشت نوترینت براث    51
جدول 3-5- نتایج آنالیز مینرالوژی و تجزیه سرندی خاک    52
جدول 3-6- توزیع اندازه ذرات خاک    52
جدول 4-1- میانگین بقاء باکتری در سطوح مختلف دمایی (درجه سانتیگراد)    55
جدول 4-2- میانگین بقاء باکتری در زمان‏ (روز شمارش)    55
جدول 4-3- میانگین بقاء باکتری در رقت‏های مختلف    55
جدول 4-4- تجزیه واریانس سطوح مختلف دما بر بقاء باکتری    56
جدول 4-5- تجزیه واریانس سطوح مختلف زمان شمارش کلنی‏ها بر بقاء باکتری    56
جدول 4-6- تجزیه واریانس سطوح مختلف رقت بر بقاء باکتری    56
جدول 4-7- مقایسه میانگین بقاء باکتری در سطوح مختلف دما به روش دانکن (α < 0.05)    57
جدول 4-8- مقایسه میانگین بقاء باکتری در سطوح مختلف دما به روش دانکن (α <0.05)    57
جدول 4-9- مقایسه میانگین بقاء باکتری در سطوح مختلف رقت به روش دانکن (α <0.05)    57
جدول 4-10- میانگین بقاء باکتری بر اساس مواد حامل فرموله شده در تنش دمایی    58
جدول 4-11- تجزیه واریانس بین مواد حامل فرموله شده مختلف بر بقاء باکتری    58
جدول 4-12- مقایسه میانگین تاثیر مواد حامل بر بقاء باکتری به روش دانکن (α <0.05)    59
جدول 4-13- میانگین بقاء باکتری بر اساس فاکتورهای دما، رقت، زمان شمارش کلنی‏ها و مواد حامل فرموله شده    60
جدول 4-14- میزان معنی داری فاکورهای دما (Temperature)، رقت (Dilution)، زمان شمارش کلنی‏ها (Day) و مواد حامل فرموله شده (Carrier Materials) بر بقاء باکتری در تنش دمایی    62
جدول 4-15- میانگین بقاء باکتری در سطوح مختلف شوری    65
جدول 4-16- میانگین بقاء باکتری در زمان‏ (روز شمارش)    65
جدول 4-17- میانگین بقاء باکتری در رقت‏های مختلف    65
جدول 4-18- تجزیه واریانس سطوح مختلف شوری بر بقاء باکتری    66
جدول 4-19- تجزیه واریانس سطوح مختلف زمان شمارش کلنی‏ها بر بقاء باکتری    66
جدول 4-20- تجزیه واریانس سطوح مختلف رقت بر بقاء باکتری    66
جدول 4-21- مقایسه میانگین بقاء باکتری در سطوح مختلف شوری  به روش دانکن (α <0.05)    66
جدول 4-22- مقایسه میانگین بقاء باکتری در سطوح مختلف زمان به روش دانکن (α <0.05)    67
جدول 4-23- مقایسه میانگین بقاء باکتری در سطوح مختلف رقت به روش دانکن (α <0.05)    67
جدول 4-24- میانگین بقاء باکتری بر اساس مواد حامل فرموله شده در تنش شوری    67
جدول 4-25- تجزیه واریانس بین مواد حامل فرموله شده مختلف بر بقاء باکتری تحت تنش شوری    68
جدول 4-26- مقایسه میانگین تاثیر مواد حامل بر بقاء باکتری به روش دانکن  در تنش شوری(<0.05)    68
جدول 4-27- میانگین بقاء باکتری بر اساس فاکتورهای شوری، رقت، زمان شمارش کلنی‏ها و مواد حامل فرموله شده    69
جدول 4-28- میزان معنی داری فاکورهای شوری (Salinity)، رقت (Dilution)، زمان شمارش کلنی‏ها (Day) و مواد حامل فرموله شده (Carrier Materials) بر بقاء باکتری در تنش شوری    71
جدول 4-29- مقایسه میانگین بقاء باکتری در سطوح مختلف خشکی  و مواد حامل به روش دانکن (α <0.05)     72
جدول 4-30- میانگین بقاء باکتری بر اساس مواد حامل فرموله شده در تنش خشکی    73
جدول 4-31- مقایسه میانگین تاثیر مواد حامل بر بقاء باکتری در تنش خشکی به روش دانکن       (α <0.05)    73
جدول 4-32- میانگین بقاء باکتری بر اساس فاکتورهای خشکی و مواد حامل فرموله شده    73
جدول 4-33- میزان معنی داری فاکورهای خشکی و مواد حامل فرموله شده (Carrier Materials) بر بقاء باکتری    75
جدول 4-34- تجزیه واریانس سطوح مختلف pH بر بقاء باکتری    76
جدول 4-35- تجزیه واریانس سطوح مختلف زمان شمارش کلنی‏ها بر بقاء باکتری    76
جدول 4-36- تجزیه واریانس سطوح مختلف رقت بر بقاء باکتری    77
جدول 4-37- مقایسه میانگین بقاء باکتری در سطوح مختلف pH  به روش دانکن (α <0.05)    77
جدول 4-38- مقایسه میانگین بقاء باکتری در سطوح مختلف زمان به روش دانکن تحت تاثیر تنش pH (α <0.05)    77
جدول 4-39- مقایسه میانگین بقاء باکتری در سطوح مختلف رقت به روش دانکن تحت تاثیر تنش pH(α <0.05)    78
جدول 4-40- میانگین بقاء باکتری بر اساس مواد حامل فرموله شده تحت تاثیر تنش pH    78
جدول 4-41- تجزیه واریانس بین مواد حامل فرموله شده مختلف بر بقاء باکتری    78
جدول 4-42- مقایسه میانگین تاثیر مواد حامل بر بقاء باکتری به روش دانکن (α <0.05)    79
جدول 4-43- میانگین بقاء باکتری بر اساس فاکتورهای pH ، رقت، زمان شمارش کلنی‏ها و مواد حامل فرموله شده    80
جدول 4-44- میزان معنی داری فاکورهای pH ، رقت (Dilution)، زمان شمارش کلنی‏ها (Day) و                                             مواد حامل فرموله شده (Carrier Materials) بر بقاء باکتری    82
جدول 4-45- تجزیه واریانس سطوح مختلف زمان شمارش کلنی‏ها بر بقاء باکتری در تنش uv    84
جدول 4-46- تجزیه واریانس سطوح مختلف رقت بر بقاء باکتری در تنش uv    84
جدول 4-47- مقایسه میانگین بقاء باکتری در سطوح مختلف uv به روش دانکن (α <0.05)    85
جدول 4-48- مقایسه میانگین بقاء باکتری در سطوح مختلف رقت به روش دانکن تحت تنش uv  (α <0.05)    85
جدول 4-49- میانگین بقاء باکتری بر اساس مواد حامل فرموله شده تحت تنش uv    86
جدول 4-50- تجزیه واریانس بین مواد حامل فرموله شده مختلف بر بقاء باکتری تحت تنش uv    86
جدول 4-51- مقایسه میانگین تاثیر مواد حامل بر بقاء باکتری به روش دانکن تحت تنش uv        (α <0.05)    86
جدول 4-52- میانگین بقاء باکتری بر اساس فاکتورهای uv، رقت، زمان شمارش کلنی‏ها و مواد حامل فرموله شده    87
جدول 4-53- میزان معنی داری فاکورهای uv، رقت (Dilution)، زمان شمارش کلنی‏ها (min) و                                             مواد حامل فرموله شده (Carrier Materials) بر بقاء باکتری    88
جدول 4-54- میانگین بقاء باکتری در ریزوسفر گیاه تربچه بر اساس مواد حامل فرموله شده    90
جدول 4-55- تجزیه واریانس بین مواد حامل فرموله شده مختلف بر بقاء باکتری در ریزوسفر گیاه تربچه    90
جدول 4-56- مقایسه میانگین بقاء باکتری در ریزوسفر گیاه تربچه به روش دانکن (α <0.05)    91
جدول 4-57- میانگین بقاء باکتری در مواد حامل مختلف تلقیح شده به بذر    92
جدول 4-58- میانگین بقاء باکتری در زمان‏ (روز شمارش)    92
جدول 4-59- مقایسه میانگین تاثیر مواد حامل بر بقاء باکتری به روش دانکن (α <0.05)    93
جدول 4-60- مقایسه میانگین بقاء باکتری در حامل های مختلف به روش دانکن (α <0.05)    93
جدول 4-61- میانگین بقاء باکتری در مواد حامل فرموله شده و زمان شمارش کلنی‏ها    94
جدول 4-62- میزان معنی داری فاکورهای زمان شمارش کلنی‏ها (Day) و مواد حامل فرموله شده (Carrier Materials) بر بقاء باکتری    94
جدول 4-63- میزان معنی داری فاکورهای طول برگ (Leaf Lenght)، وزن خشک (Dry Weight) ،  وزن تر (Fersh Weight) ، فسفات خاک (Soil Phosphate) و فسفات گیاه (Plant Phosphate)بر بقاء باکتری    96
جدول 4-64- مقایسه میانگین طول برگ در حامل های مختلف به روش دانکن (α <0.05)    97
جدول 4-65- مقایسه میانگین وزن خشک در حامل های مختلف به روش دانکن (α <0.05)    97
جدول 4-66- مقایسه میانگین وزن تر در حامل های مختلف به روش دانکن (α <0.05)    98
جدول 4-67- مقایسه میانگین فسفات خاک در حامل های مختلف به روش دانکن (α <0.05)    98
جدول 4-68- مقایسه میانگین فسفات گیاه در حامل های مختلف به روش دانکن (α <0.05)    99
جدول 4-69- میانگین بقاء باکتری در زمان‏ (روز شمارش) در دوره 3 ماهه    103
جدول 4-70- میانگین بقاء باکتری در رقت‏های مختلف در دوره 3 ماهه    103
جدول 4-71- تجزیه واریانس سطوح مختلف زمان شمارش کلنی‏ها بر بقاء باکتری در دوره 3 ماهه    104
جدول 4-72- تجزیه واریانس سطوح مختلف رقت بر بقاء باکتری در دوره 3 ماهه    104
جدول 4-73- مقایسه میانگین بقاء باکتری در حامل‏های مختلف در زمان های شمارش مختلف به روش دانکن (α <0.05)    104
جدول 4-74- مقایسه میانگین رقت بر بقاء باکتری به روش دانکن  در دوره 3 ماهه (α <0.05)    105
جدول 4-75- میانگین بقاء باکتری بر اساس مواد حامل فرموله شده در دوره 3 ماهه    105
جدول 4-77- مقایسه میانگین تاثیر مواد حامل بر بقاء باکتری به روش دانکن (α <0.05)    106
جدول 4-78- میانگین بقاء باکتری در مواد حامل فرموله شده، رقت و زمان شمارش کلنی‏ها    107
جدول 4-79- میزان معنی داری فاکورهای رقت (Dilution)، زمان شمارش کلنی‏ها (Day) و مواد حامل فرموله شده (Carrier Materials) بر بقاء باکتری    108


فهرست نمودارها
عنوان                                                شماره صفحه
نمودار 3-1- منحنی استاندارد فسفر(گیاه)    50
نمودار 4-1- تاثیر مواد حامل بر بقاء باکتری بر اساس فاکتور زمان شمارش کلنی‏ها (روز)    63
نمودار 4-2- تاثیر مواد حامل بر بقاء باکتری بر اساس فاکتور دما (درجه سانتیگراد)    63
نمودار 4-3- تاثیر مواد حامل بر بقاء باکتری بر اساس فاکتور رقت    64
نمودار 4-4- تاثیر مواد حامل بر بقاء باکتری بر اساس فاکتور شوری (درصد)    72
نمودار 4-5- تاثیر مواد حامل بر بقاء باکتری بر اساس فاکتور زمان شمارش کلنی‏ها (روز) تحت تنش شوری    72
نمودار 4-6- تاثیر مواد حامل بر بقاء باکتری بر اساس فاکتور رقت تحت تنش شوری    73
نمودار 4-7- تاثیر سطوح مختلف خشکی و ماده حامل بر بقاء باکتری در فرمول    76
نمودار 4-8- تاثیر مواد حامل بر بقاء باکتری بر اساس فاکتور pH    83
نمودار4 -9- تاثیر مواد حامل بر بقاء باکتری بر اساس فاکتور زمان شمارش کلنی‏ها (روز) تحت تنش pH    83
نمودار 4-10- تاثیر مواد حامل بر بقاء باکتری بر اساس فاکتور رقت تحت تنش pH    84
نمودار 4-11- تاثیر مواد حامل بر بقاء باکتری بر اساس فاکتور زمان شمارش کلنی‏ها (دقیقه) تحت تنش uv    88
نمودار 4-12- تاثیر مواد حامل بر بقاء باکتری بر اساس فاکتور رقت تحت تنش uv    89
نمودار 4-14- بقا باکتری در سطوح مختلف تلقیح    95
نمودار 4-15- اندازه طول برگ در تیمارها    99
نمودار 4-16- وزن خشک گیاه در تیمارها    100
نمودار 4-17- وزن تر گیاه در تیمارها    100
نمودار 4-18- آنالیز فسفات خاک گلدان ها در تیمارها    101
نمودار 4-19- آنالیز فسفات گیاه در تیمارها    101
نمودار 4-21- بقا باکتری در حامل‏ و رقت‏های مختلف در مدت 90 روز    108
نمودار 4-22- بقا باکتری در حامل‏های مختلف در مدت 90 روز    109
نمودار 4-23- بقا باکتری درمدت زمان 90 روز‏ و رقت‏های مختلف    109

 
فهرست شکل ها  
عنوان                                                شماره صفحه
شکل 1-1- تغییر و تبدیلات فسفر خاک توسط باکتری ها    11
شکل 1-2- مکانیسم های انحلال فسفات توسط باکتری    14
شکل 1-3- تاثیر باکتری های حل کننده فسفات روی گیاهان    16
شکل 1-4- لیگنیت    30
شکل 1-5- گیاه تربچه    31
شکل 1-6- تربچه نقلی یا چهار فصل    34
شکل 3-1- تیمارهای فرموله شده از لیگنیت، سویا، خاک فسفات    44
شکل 4-1- کشت تازه از سویه روی محیط pvk    54
شکل 4-2-کشت روی محیط pvk    54
شکل 4-3- مقایسه ظاهری تیمار فرمول با کنترل    90
شکل 4-4- تیمارهای بکارگرفته شده در گلدان ها در هفته اول و دوم    102
شکل 4-5- مقایسه ظاهری تیمارها با کنترل    102


 
چکیده
مصرف بی رویه کودهای شیمیایی موجب عدم تعادل عناصر و مواد غذایی موجود در خاک، کاهش بازده محصولات کشاورزی و به خطر افتادن سلامت انسان¬ها و دیگر موجودات زنده شده است. به همین علت امروزه استفاده از کودهای زیستی مورد توجه قرار گرفته است. باکتری¬های حل کننده فسفات برای افزایش فراهمی فسفر مورد نیاز گیاه کارآمد به نظر می رسند. با توجه به اینکه اغلب خاک های ایران آهکی بوده و در اقلیم‏های خشک و نیمه خشک هستند، وجود pH بالا، درصد زیاد کربنات کلسیم، کمبود مواد آلی و خشکی خاک باعث شده اند که جذب فسفر کمتر از مقدار لازم برای تامین رشد بهینه اغلب محصولات کشاورزی باشد، لذا هدف از این پژوهش بررسی تاثیر spp.  Streptomyces جدا شده از خاک بر انحلال فسفات به منظور تولید کود زیستی فسفاته می باشد. جهت حداکثر افزایش بقاء باکتری در ماده حامل از سطوح تلقیح مختلفی که شامل لیگنیت و مواد تکمیلی پودر سویا و خاک فسفاته با نسبتهای مشخص بود استفاده شد و این مواد حامل تلقیح شده تحت تنشهای دما، شوری، خشکی، pH و uv قرار گرفتند همچنین کلیه مواد حامل ساخته و تلقیح شده بطور جداگانه در یک بازه زمانی 90 روز از لحاظ بررسی بقاء باکتری سنجیده شدند. بهترین فرمول به دست آمده از تنشها در گلدان به کارگیری شد. همچنین تیمارهای دیگری نیز از لیگنیت با سطوح مختلف ساخته و با باکتری و بذر تربچه تلقیح شد و بقاء باکتری در بازه 24 ساعته اندازه گیری شد و بعد از آن در گلدان به کار گرفته شدند. با توجه به نتایج به دست آمده بهترین فرمول به دست آمده از تنش¬ها و بازه زمانی 90 روز، فرمول لیگنیت + خاک فسفات 2% + سویا 1% تعیین شد و بعد از بکارگیری در گلدان بهترین نتیجه را نسبت به سایر مواد حامل و کنترل نشان داد و پارامترهای رشد گیاه تربچه و جذب فسفات گیاه را بهتر از تمامی مواد حامل و کنترل افزایش داده است. از بین تیمارهای ساخته شده و تلقیح شده به بذر تیمار شامل 200 گرم حامل + خاک مزرعه بهترین نتایج را نشان داد و بعد از به کارگیری تیمارها در گلدان نیز تیمار شامل 200 گرم حامل + خاک مزرعه بهترین نتیجه را نشان داد. این فرمول بهترین نتیجه را در پارامترهای رشد گیاه تربچه و جذب فسفات گیاه نسبت به سایر تیمارها نشان داد. در یک نتیجه گیری کلی، فرمول لیگنیت + خاک فسفات 2% + سویا 1% به عنوان فرمول نهایی و اصلی برای به کارگیری در آزمایشات بعدی و مقیاس مزرعه پیشنهاد می‏گردد.

کلید واژگان: باکتری‏های حل کننده فسفات،spp.  Streptomyces ، کود زیستی فسفاته، لیگنیت، پودر سویا، گیاه تربچه



فصل اول:
کلیات تحقیق

1-1- مقدمه
طی چند دهه اخیر به علت افزایش جمعیت و تقاضای روزافزون برای مواد غذایی، مصرف کود های شیمیایی به منظور افزایش مقدار تولید در واحد سطح به شدت افزایش یافته است. استفاده از کودهای شیمیایی فسفاته تاریخچه دیرینه ای دارد و به انقلاب سبز و معرفی کودهای شیمیایی بر می گردد(ساریخانی و همکاران 1389، 13).‏‏‏ مصرف بی رویه کودهای شیمیایی موجب عدم تعادل عناصر و مواد غذایی موجود در خاک، کاهش بازده محصولات کشاورزی و به خطر افتادن سلامت انسان ها و دیگر موجودات زنده خواهد شد. نیاز به جایگزینی مناسب برای کودهای شیمیایی زمانی احساس می شود که بدانیم علاوه بر آسیب های زیست محیطی ناشی از کاربرد کودهای شیمیایی، محدود بودن منابع، افزایش قیمت تمام شده و تثبیت شدن قسمت اعظمی از کودهای فسفاته مصرفی به شکل غیرقابل استفاده برای گیاه نیز پیامدهای استفاده از این کودهای شیمیایی هستند(ساریخانی و همکاران 1389، 13).
ضرورت یافتن جایگزینی مناسب برای رهاسازی فسفات تجمع یافته در خاک زمانی بیشتر احساس می شود که  بر این امر واقف گردیم که منابع فسفات موجود در خاک  قابلیت تامین فسفات مورد نیاز گیاهان برای تولید بهینه تا صد سال را دارا می باشد. بنابراین کافی است که این منبع عظیم فسفر را به صورت قابل جذب و استفاده برای گیاه تبدیل نمود (Bashan 1998, 16). به همین علت امروزه استفاده از کودهای بیولوژیک مورد توجه قرار گرفته است که مکانیسم عمل آنها قابلیت جذب عناصر غذایی گیاه در خاک را افزایش می‏دهد. باکتری¬های حل کننده فسفات برای افزایش فراهمی فسفر مورد نیاز گیاه کارآمد به نظر       می رسند (Bashan 1998, 16). فسفر در خاک‌ها به دو شکل آلی و معدنی  وجود دارد اما غلظت فسفات محلول در خاک معمولاً خیلی پایین است (Bashan 1998, 16). قسمت اعظم میکرو ‏‏ارگانیسم‏های محلول کننده فسفات در ریزوسفر گیاهان متمرکز شده‌اند. میکروب‏های خاک توانایی تبدیل اشکال نامحلول فسفر به اشکال محلول را دارند. ترکیبات آلی و معدنی خارج شده از ریشه، باعث افزایش جمعیت میکروبی در اطراف ریشه می‌گردند . با توجه به اینکه میکروارگانیسم‏های محلول کننده فسفات در خاک به طور طبیعی وجود دارند و موجب افزایش فسفر قابل دسترس و تحریک رشد گیاه می‌شوند، اما تعداد آن‌ها در خاک به اندازه کافی نیست تا با سایر میکروارگانیسم‏هایی که در ریزوسفر قرار دارند رقابت کنند. بنابراین تلقیح گیاهان با میکروارگانیسم‏های محلول کننده فسفات اثرات مفیدی دارد. باکتری¬های حل کننده فسفات طی سه مکانیسم تولید اسیدهای آلی، کلات کردن و واکنش های تبادل لیگاند موجب انحلال ترکیبات نامحلول فسفات می‏شوند. طی فرآیند انحلال بخشی از فسفر محلول، توسط باکتری حل کننده فسفات استفاده می‏شود اما از آنجائیکه مقدار فسفر حل شده بیش از نیاز باکتری‏ها است لذا این مقدار آزاد می‏تواند در اختیار گیاه قرار گیرد. اغلب خاک‏های ایران دارای آهک و گچ بوده و این امر می‏تواند موجب تثبیت فسفر شود. در نتیجه فسفر جذب ذرات کلوئیدی خاک شده و از دسترس گیاه خارج می شود. بنابراین در غالب خاک‌ها از نظر مقدار فسفر کل مشکل وجود ندارد، بلکه مشکل، در دسترس قرار گرفتن آن می‌باشد. فسفر جذب عناصری مانند Ca2+، Fe3+  و Al3+ شده و باعث تشکیل ترکیبات نامحلول می‌گردد (Bhattacharyya and Jha 2012, 28).
 PGPR یا باکتری های تحریک کننده رشد گیاه، گروهی از باکتری‏های ریزوسفر هستند که به طور مستقیم (انحلال فسفات، تولید هورمون¬ها...) و غیر مستقیم (تولید کاتالاز، سیانید هیدروژن و....) موجب افزایش رشد گیاه می شوند. با توجه به طیف گسترده اثرات مثبت برخی از باکتری¬های سودمند از قبیل تولید سیدروفور، تولید هورمون¬ها و ویژگی بیوکنترلی آنها بر ضد قارچها و عوامل بیماریزا، متمرکز شدن بر تحقیقاتی که منجر به حصول چنین میکروارگانیسم های چند منظوره ای باشد بسیار مثمر ثمر خواهد بود، زیرا کودهای زیستی تلقیحات میکروبی هستند که علاوه بر افزایش جذب عناصر غذایی، موجب افزایش رشد گیاه می‏شوند، بنابراین با کاربرد سویه های PGPR  می‏توان چندین هدف را به طور همزمان دنبال کرد ((Boraste 2009, 1; Saharan and Nehra 2011, 21.
استفاده از ماده حامل مناسب در تولید یک کود زیستی با کیفیت بسیار مهم و ضروری است. ذغال¬سنگ نارس ، ذغال¬سنگ قهوه¬ای ، چارکل ، گل یا لجن فشرده، کودهای مزرعه¬ای و مخلوط خاک¬ها می¬توانند به عنوان یک حامل مناسب استفاده شوند. ذغال سنگ طبیعی و ذغال سنگ قهوه ای حامل¬های بهتری برای کودهای زیستی هستند. الحاق میکروارگانیسم به ماده حامل باید به گونه ای باشد که قابل حمل و لمس راحت و تجزیه طولانی باشد و کمترین اثر را روی کود زیستی بگذارد. بر طبق تحقیقات هوبن  و سوماسه گاران  یک ماده حامل خوب برای تلقیح بذر، باید ارزان و به راحتی در دسترس باشد، علاوه بر این نباید برای سویه های باکتریایی و گیاه سمی باشد زیرا حامل می تواند روی بذر اثر بگذارد. همچنین حامل باید ظرفیت جذب رطوبت خوبی داشته باشد و به خوبی به بذر متصل شود و در نهایت حامل باید ظرفیت بافری و pH مناسبی داشته باشد و به راحتی بتوان آن را با اشعه گاما یا اتوکلاو استریلیزه کرد                 (Boraste 2009, 1).
باتوجه به اینکه در خاک های آهکی ایران که در اقلیم های خشک و نیمه خشک تحول پیدا کرده اند، وجود pH بالا، درصد زیاد کربنات کلسیم، کمی مواد آلی و خشکی خاک باعث شده اند که جذب فسفر کمتر از مقدار لازم برای تامین رشد بهینه اکثر محصولات کشاورزی باشد. لذا هدف از این پژوهش بررسی تاثیر   spp.  Streptomyces جدا شده از خاک بر انحلال فسفات به منظور تولید کود زیستی فسفاته می باشد.

1-2- روابط میکروارگانیسم با ریشه گیاهان
میکروارگانیسم های خاک ارتباط های گسترده و متنوعی با ریشه گیاهان عالی دارند که مهمترین آنها عبارتند از:
1.    همزیستی: به شکل ارتباط های میکوریزی و تشکیل گرهک در گیاهان خانواده لگومینوز میباشد.
2.    انگلی: دراین حالت ارگانیسم¬های انگل به صورت غیراختصاصی تا بسیار اختصاصی عمل می کنند.
3.    روابط تقریباً نامشخص که در ریزوسفر و سطح ریشه گیاه وجود دارد.
خاک غنی از میکروارگانیسم هایی است که از لحاظ شکل، ساختار و نقش متفاوت هستند. از طرف دیگر خاک محیطی است که درآن بخش های زیرزمینی گیاه گسترش و استقرار می یابد. تراکم ریشه گیاهان عالی در خاک زیاد است. وقتی ریشه درخاک رشد می کند، شرایط خاک مجاور ریشه به طرق مختلف به طور قابل ملاحظه ای تغییر می کند. وقتی محیط کوچک خاک مجاور ریشه ها تغییر می یابد، این تغییرات روی میکروارگانیسم های خاکزی موجود دراین منطقه اثر می گذارند. گیاهان به طور ذاتی فاقد سیستم دفعی مشخصی بوده و بسیاری از ترکیبات به شکل مواد زائد از قسمت های مختلف اندام های گیاه آزاد می شوند. سطح ریشه یکی از این مناطقی است که از آنجا ترکیبات ناخواسته و به طور مستمر از گیاه تراوش می شوند و در مجاور سطح ریشه تجمع می یابند. موادی که به این صورت از ریشه ها آزاد می شوند، ترشحات نامیده می شوند. ترکیبات آلی و معدنی خارج شده از ریشه، باعث افزایش جمعیت میکروبی در منطقه اطراف ریشه ها می گردند. علاوه بر ترشحات، سلولهای جدا شده از ریشه که عمدتاً از کلاهک جوان در حال رشد ریشه مشتق می شوند، انرژی اضافی را برای توسعه جمعیت میکروبی فراهم می کنند (Brahmaprakash and Sahu 2012, 92).

پایان نامه فراوانی نسبی آنزیم متالوبتالاکتاماز درسویه‌های سودوموناس ائروژینوزای جدا شده از نمونه‌های بالینی در شهر یزد

اختصاصی از کوشا فایل پایان نامه فراوانی نسبی آنزیم متالوبتالاکتاماز درسویه‌های سودوموناس ائروژینوزای جدا شده از نمونه‌های بالینی در شهر یزد دانلود با لینک مستقیم و پرسرعت .

فرمت فایل : WORD (قابل ویرایش)

تعداد صفحات:99

پایان نامه برای دریافت درجه دکترای عمومی

عنوان :  فراوانی نسبی آنزیم متالوبتالاکتاماز درسویه‌های سودوموناس ائروژینوزای جدا شده از نمونه‌های بالینی در شهر یزد به روش  E Test

فهرست مطالب:
عنوان    صفحه
فصل اول: مقدمه و مروری بر مطالعات مشابه    1
1-1- خانواده پسود و موناداسه آ    2
1-2- تاریخچه P. aeruginosa    3
1-2-1- خصوصیات مورفولوژیک P. aeruginosa    5
1-2-2- خصوصیات رشد    5
1-2-3- هوازی‌های اجباریObligate aerobes    5
1-2-4- مشخصات کشت    6
1-2-5- مواد آلی مورد نیاز    7
1-2-6- محیط‌های کشت    8
1-2-7- پیگمان    9
1-2-8- شاخص‌های بیماریزایی در P. aeruginosa    11
1-2-8-1- پیلی(Pili)    11
1-2-8-2- آلژینات (Alginate)    12
1-2-8-3- اندوتوکسین    12
1-2-8-4- پروتئاز‌های خارج سلولی    13
1-2-8-5- همولیزین‌ها    15
1-2-8-6- فسفولیپاز ‍C    15
1-2-8-7- رامنولیپیدها    15
1-2-9- توکسین‌های خارج سلولی    16
1-2-9-1- اگزوتوکسینA    16
1-2-9-2- اگزوآنزیم S    16
1-2-10- لوکوسیدین با وزن ملکولی بالا    17
1-2-11- سیدروفورها     17
1-2-12- لیپاز     17
1-2-13- سیتوتوکسین     18
1-2-14- پایوسیانین           18
1-2-15- سیستم ترشحی نوع III    18
1-2-16- اپیدمیولوژی    19
1-2-17- بیماریهای ناشی از P. aeruginosa    20
1-2-17-1- باکتریمی    20
1-2-17-2- عفونت‌های گوش    20
1-2-17-3- عفونت‌های چشم    21
1-2-17-4- عفونت‌های مجرای تنفسی    21
1-2-17-5- عفونت‌های استخوان و مفصل    22
1-2-17-6- عفونت‌های سیستم عصبی مرکزی    22
1-2-17-7- عفونت‌های دستگاه گوارش    22
1-2-17-8- عفونت‌های پوست و بافت نرم    23
1-2-17-9- عفونت‌های دستگاه ادارای    24
1-2-17-10- باکتریمی    24
1-2-17-11- عفونتهای استخوان و مفصل    24
1-2-17-12- عفونت‌های سیستم عصبی مرکزی    24
1-2-17-13- اندوکاردیت عفونی    25
1-2-17-14- عفونت‌های مجرای تنفسی    25
1-2-17-15- عفونت پوست و بافت‌های نرم    26
1-2-17-16- عفونت‌های ادراری    26
1-2-18- متالوبتالاکتاماز    27
1-2-19- شیوع مقاومت متالوبتالاکتامازها    27
1-2-20- انواع  تیپ‌های متالوبتالاکتاماز    28
1-2-21- The Imipenemase(IMP) Type    28
1-2-22- The Veronese Imipenemase (VIM) Type    28
1-2-23- New Delhi Metalo β-lactamase-1 (NDM-1) Type    28
1-2-24-  دیگر تیپ‌های متالوبتالاکتاماز    29
1-2-24-1- روش‌های تشخیص متالوبتالاکتاماز    29
1-2-24-2- سنجس حساسیت) آنتی بیوگرام)    29
1-2-24-3- روش E.Test به وسیله نوار    MBL    30
مروری بر مطالعات گذشته    31
فصل دوم: مواد و روش‌ها    34
2-1 بیان مسئله و اهمیت موضوع    35
2-2- اهداف    36
2-2-1- اهداف اصلی طرح    36
2-2-2- اهداف ویژه طرح    36
2-3- سؤالات و فرضیات    36
2-4- نوع و روش مطالعه    37
2-5- روش کار    37
2-5-1- انواع محیط کشت    37
2-5-2- مکانکی آگار(Mac Conkey agar)    37
2-5-3- محیط کشت  SIM    38
2-5-4- روش آماده سازی معرف کواکس جهت تست اندول    39
2-5-5- محیط کشت OF    39
2-5-6- محیط کشت TSI    39
2-5-7- محیط سیمون سیترات    40
2-5-8- محیط مایع( ( MR-VP    40
2-5-9- طرز تهیه معرف VP    41
2-5-10- طرز تهیه معرف MR    41
2-5-11- تست اکسیداز    41
2-6- روش اجرای کار    42
2-6-1- جمع آوری نمونه‌ها    42
2-6-2- تعیین آنزیم متالوبتالاکتاماز    43
2-6-3- آنالیز آماری    44
2-6-4- محدودیت و مشکلات اجرایی طرح    44
2-7- جدول متغیرها    45
فصل سوم: یافته‌ها    46
3-1- نتایج    47
فصل چهارم: بحث، نتیجه گیری و پیشنهادات    69
4-1- بحث    70
4-2- نتیجه گیری    75
4-3- پیشنهادات    75
ABSTRACT    76
فهرست مراجع    77
ضمیمه: پرسشنامه    84
 
فهرست جدول‌ها
عنوان    صفحه
جدول1-1- طبقه بندی بعضی از جنس‌های  خانواده پسودوموناسه آ که از نظر طبی اهمیت دارند [5].    3
جدول 3-1- فراوانی نسبی آنزیم متالوبتالاکتاماز در نمونه‌های مورد بررسی به روش E.Test    52
جدول 3-2- فراوانی نسبی آنزیم MBL در نمونه‌های مورد بررسی بر حسب نوع نمونه    53
جدول 3-3- فراوانی نسبی آنزیم MBL در نمونه‌های مورد بررسی بر حسب بخش    54
جدول 3-4- فراوانی نسبی آنزیم MBL در نمونه‌های مورد بررسی بر حسب سن    55
جدول 3-5- فراوانی نسبی آنزیم MBL در نمونه‌های مورد بررسی بر حسب جنس    56
جدول 3-6- فراوانی نسبی مقاومت سویه‌های سودوموناس ائروژینوزا به آنتی بیوتیک‌های مختلف به روش دیسک دیفیوژن    57
جدول 3-7- فراوانی نسبی آنزیم MBL در نمونه‌های مورد بررسی بر حسب مقاومت به جنتامایسین    58
جدول 3-8- فراوانی نسبی آنزیم MBL در نمونه‌های مورد بررسی بر حسب مقاومت به کوتریموکسازول    59
جدول 3-9- فراوانی نسبی آنزیم MBL در نمونه‌های مورد بررسی بر حسب مقاومت به سیپروفلوکساسین    60
جدول 3-10- فراوانی نسبی آنزیم MBL در نمونه‌های مورد بررسی بر حسب مقاومت به سفتریاکسون    61
جدول 3-11- فراوانی نسبی آنزیم MBL در نمونه‌های مورد بررسی بر حسب مقاومت به سفپیم    62
جدول 3-12- فراوانی نسبی آنزیم MBL در نمونه‌های مورد بررسی بر حسب مقاومت به سفوتاکسیم    63
جدول 3-13- فراوانی نسبی آنزیم MBL در نمونه‌های مورد بررسی بر حسب مقاومت به سفتازیدیم    64
جدول 3-14- فراوانی نسبی آنزیم MBL در نمونه‌های مورد بررسی بر حسب مقاومت به پیپراسیلین    65
جدول 3-15- فراوانی نسبی آنزیم MBL در نمونه‌های مورد بررسی بر حسب مقاومت به تیکارسیلین    66
جدول 3-16- فراوانی نسبی آنزیم MBL در نمونه‌های مورد بررسی بر حسب مقاومت به ایمی پنم    67

 
فهرست شکل‌ها
عنوان    صفحه
شکل 3-1- نوار E.Test جهت تعیین آنزیم متالوبتالاکتاماز    68

چکیده
مقدمه و هدف: متالوبتالاکتامازها (MBL) آنزیم‌هایی هستند که توسط باسیل‌های گرم منفی غیر تخمیری مانند سودوموناس آئروژینوزا تولید شده و این سویه‌ها را نسبت به کارباپنم مقاوم می‌سازد در نتیجه سودوموناس‌های حامل ژنهای متالوبتالاکتاماز یک تهدید کلینیکی جدی بشمار می‌آیند. با توجه به اینکه مقاومت در گونه باکتریایی سودوموناس آئروژینوزا به واسطه داشتن متالوبتالاکتامازها در برابر آنتی بیوتیک‌ها رو به افزایش بوده و در کشورها، مناطق و حتی بیمارستان‌های مختلف شیوع آن‌ها متفاوت می‌باشد بر آن شدیم تا شیوع این آنزیم را در نمونه‌های جمع آوری شده از بیمارستان‌های آموزشی یزد با استفاده از روش E Test بررسی کنیم.
مواد و روش‌ها: جامعه مورد بررسی سویه‌های سودوموناس آئروژینوزا جدا شده از بیمارستان‌های دانشگاهی استان یزد در سال‌های 92-91 می‌باشد. این مطالعه از نوع مطالعه ای توصیفی-تحلیلی از نوع مقطعی می‌باشد و ایزوله‌های سودوموناس با استفاده از آزمایشات بیوشیمیایی تعیین هویت گردیده و سنجش حساسیت به آنتی بیوتیک‌ها به روش دیسک دیفیوژن انجام شده و جهت تایید وجود آنزیم MBL در سویه‌ها از روش  E.  Testاستفاده شد .
نتایج: در این مطالعه 100 نمونه سودوموناس آئروژینوزا مورد بررسی قرار گرفت.31 نمونه(31 درصد) از کل نمونه‌ها مولد متالوبتالاکتامازها بودند. بین بازه های سنی ، جنس و نوع بخش باتولید MBL توسط ایزوله های سودوموناس آئروژینوزا  ارتباط معنی داری وجود نداشت (P.value> 0.05). فراوانی این آنزیم بترتیب در ایزوله های جدا شده از نمونه های زخم سوختگی(3/56 درصد)، ادرار(4/36 درصد)، ترشح خلط(2/22 درصد) ،  خون و کاتتر(04/19 درصد) و زخم(7/16 درصد) مشاهده شد. ارتباط معنی داری بین نوع نمونه و تولید انزیم متالوبتالاکتاماز دیده نشد. سویه‌های سودوموناس آئروژینوزا بیشترین مقاومت را به ترتیب نسبت به کوتریموکسازول(85 درصد)، سفتازیدیم(83 درصد) و سفوتاکسیم(79 درصد) نشان دادند. همچنین بیشترین حساسیت سویه‌های سودوموناس آئروژینوزا به آنتی بیوتیک‌های سیپروفلوکساسین(55 درصد)، جنتامایسین(52 درصد) و پیپراسیلین(41 درصد)داشتند.
نتیجه گیری: در این مطالعه بین سن و جنس و نوع بخش با فراوانی آنزیم متالوبتالاکتامازها ارتباط معناداری یافت نشد. بیشترین فراوانی این آنزیم در نمونه‌های  زخم سوختگی و در  بخش سوختگی به دست آمد. بیشترین مقاومت آنتی بیوتیکی به ترتیب به کوتریموکسازول ، سفتازیدیم و سفوتاکسیم و بیشترین حساسیت به سیپروفلوکساسین، جنتامایسین و پیپراسیلین بود. نتایج نشان دادکه این ایزوله ها  علاوه بر کارباپنم ها نسبت به بسیاری از آنتی بیوتیک ها بخصوص سفاسپورین ها مقاوم هستند، لذا لازم است قبل از شروع درمان سنجش حساسیت انتی بیوتیکی و غربالگری این آنزیم  انجام شود.
واژه‌های کلیدی:  سودوموناس آئروژینوزا، مقاومت آنتی بیوتیکی، متالوبتالاکتاماز( ( MBL

گزارش کارآموزی رشته عمران مجتمع گل گهر جدا کردن آهن از سنگ آهن

اختصاصی از کوشا فایل گزارش کارآموزی رشته عمران مجتمع گل گهر جدا کردن آهن از سنگ آهن دانلود با لینک مستقیم و پرسرعت .

دانلود گزارش کارآموزی رشته عمران  مجتمع گل گهر جدا کردن آهن از سنگ آهن بافرمت ورد وقابل ویرایش تعدادصفحات 18

گزارش کارآموزی آماده,دانلود کارآموزی,گزارش کارآموزی,گزارش کارورزی


این پروژه کارآموزی بسیار دقیق و کامل طراحی شده و جهت ارائه واحد درسی کارآموزی میباشد

مقدمه:

مجتمع معدنی گل گهر یکی از بزرگترین پروژه های کشور است.کار این مجتمع جدا کردن آهن از سنگ آهن می باشد.این پروژه توسط دو فاز اجراء می شود که البته فاز 1و2 مثل هم است . حال برای اینکه این پروژه بیشتر و سریعتر قابل بهره برداری باشد فاز3 یا فاز طرح و توسعه ای در دست برنامه ریزی و ساخت است .کار آموزی من در شرکتی است که مسولیت کلی راه اندازی برق طرح توسعه را بعهده دارد.مجتمع فولاد مبارکه و نورد اهواز توسط براده آهنی که از گل گهر استخراج می شود تغذیه می شوند .البته براده آهنی که قرار است به نورد اهواز برود ابتدا به کشور بحرین می فرستند تا کار گندله سازی انجام شود و بعد دوباره وارد کشور می شود و به اهواز می رود.البته قرار است که بعد از اجرای فاز3 طرح گندله سازی در کشور در خود منطقه گل گهر اجراء شود ،که بسیار پروژه عظیمی است و ما امیدواریم این پروژه هم هر چه سریعتر اجراء شود. در اینجا لازم می دانم که یک توضیح مختصری در مورد چگونگی عملکرد پروسه گل گهر سیر جان بدهم. پس از انفجار دینامیت در معدن که این کار توسط یک شرکت خاصی انجام           می شود ،سنگ توسط سنگ شکن به قطعاتی کوچک تبدیل می شود و سپس توسط نوار نقاله ای به سیلوهای انتقال می یابد .از این پس توسط یک نوار نقاله دیگر از سیلو به آسیاب خشک انتقال می یابد.قبل از ورود به آسیاب خشک در یک قسمتی مقداری آب به آنها پاشیده می شود تا مقداری رطوبت گرفته تا عمل آسیاب راحت تر و همچنین از بلند شدن گرد و غبار جلو گیری کند. پس از اینکه سنگ ها به ذرات ریز مورد نظر تبدیل شد ،وارد دستگاهی بنام کلاسیفایرClasfire می شود.در اینجا است که ذرات موجود بر اساس وزن به Screen (غربالها)یا به سیکلنها راه می یابند.ذراتی که از screen عبور می کنند اجازه ورود به اربینها را پیدا می کنند.سپس وارد جدا کننده خشک  می شوند.در این مرحله مقداری از الکن آن گرفته می شود و مقدار آلکنی که قصر می رود وارد میدل بینها خواهند شد و سپس از آنجا وارد مرحله آسیاب تر می شود در این مرحله پس از عبور از آسیاب تر وارد سپرتورهای (جداکننده های)تر و سپس فیلترها خواهند شد که فیلتر ها باعث جدا شدن آب از آهن شده و آهن خالص توسط نوار نقاله به خارج راه پیدا می کند .اما ذراتی که پس از خروج از کلاسیفایر وارد سیلکنها می شوند پس از جدا شدن     مرحله ایی را مانند آنچه که قبلا گفته شد طی می کنند.اما مقدار آهن و غباری که از سیلکنها بیرون می رود وارد (گتماهی به نامESP Eictro-static-sprator) )می شود که در این مرحله آهن موجود در گرد غبار توسط ESPگرفته می شود و غبار باقیمانده توسط دودکش که ارتفاع آن حدود 50 متر است بیرون می رود. پروسهESP : در داخل سه مخزن بزرگ تعداد زیادی صفحه های مشبک که به عنوان قطبهای مثبت و منفی عمل کرده و ولتاژ زیادی روی آنها اعمال می شود و باعث جذب ذرات می شوند قرار گرفته است و با ایجاد ضربه یا شوک این ذرات از روی صفحات جدا شده و به داخل قیف یا hopper فرو می ریزند و دهانه hopper بوسیله یک سری المنت های حرارتی که به صورت Lope دور تا دور دهانه قرار گرفته اند و در انتها به ترموستات وصل می شوند این گرما باعث می شود تا از چسبندگی این مواد در دهانه هاپر جلوگیری شود بعد از ریختن از داخل هاپرها بر روی یک سری نوار نقاله ایی ریخته و بارگیری   می شود و گرد و غبار آن با آب قاطی شده و به صورت دوغ آب بیرون رفته و به بیابانهای اطراف ریخته می شود.  فهرست: در اینجا کار گروه برق و ابزار دقیق در این پروژه طرح و توسعه که به این صورت است آشنا می شویم. 1-اجرای عملیات نصب نردبانهای کابل و سینی کابل 2-اجرای عملیات کابل کشی 3-اجرای عملیات نصب روشنائی Lighting 4-اجرای نصب ترانسفورماتورها 5-اجرای نصب سیستم اعلام حریقfire alarm systm 6-اجرای عملیات نصب تابلوی روشنائی lighting panels 7-اجرای عملیات نصب سیستم اطفای حریقfire lighting systm 8-اجرای عملیات نصب سیتم ارتینگerthing systm 9-اجرای عملیات نصب سیستم باس داکت 10-اجرای عملیات نصب پانلهای واتاژ پایینDow volthge 11-اجرای عملیات نصب تابلوهای Motor center vonrol Mcc 12-اجرای عملیات نصب گندله های کابلcable gland 13-اجرای عملیات نصب آلارم و جانبی 14-اجرای عملیات سیستم DC,UPS

تحقیق جدا سازی محصولات طبیعی آبزی

اختصاصی از کوشا فایل تحقیق جدا سازی محصولات طبیعی آبزی دانلود با لینک مستقیم و پرسرعت .

فرمت فایل : WORD (قابل ویرایش)

تعداد صفحات:131

فهرست مطالب:

پیشگفتار ۵
۱-۱ : روش کلی مورد استفاده در HBOI 12
1-2 ـ کنترل ارگانیسم های آبزی ۱۳
۲-۲ :جمع آوری ۱۵
۳-۲ : ذخیرة ارگانیسم های آبزی ۲۱
۳- استخراج ۲۲
۱-۳ : بی مهرگان ۲۲
۲-۳ : جلبک های بزرگ ۲۴
۳-۳ – طرح روند مورد استفاده در آزمایشگاه .مؤلف در HBOI 25
4-برنامه ریزی برای روش جداسازی ۲۷
۱-۴ – طرح های تقسیم ۲۷
۲ـ۴ : استخراج فاز جامد ۲۹
۳ـ ۴ : بیولوتوگرافی ۳۰
۵: کروماتوگرافی ستون ۳۱
۱-۵ : کروماتوگرافی ستون خلاء ۳۲
۱-۶ : شک و تردید در مورد طبقه بندی ۳۶
۲-۶ : خالص سازی ترکیبات محلول در آب : اثرات نمک ۳۷
۳-۶ – پلی آمین ها ۳۸
۴-۶ : ترکیبات دارای استر سولفات قطبی ۳۹
۵-۶ : محلولهای پیچیدة متابیولیست های قطبی :‌ تولومیکالین ها / کرامبسسیدین ها / باتزلادین ها ۴۲
۶-۶ : ترکیباتی با خواص کروماتوگرافی حساس به PH – الگالوئیدهای پلی آکریدین ۴۴
۷-۶ – متابولیست های اثر استثنای ـ اسونجیستانین ها ۴۷
۸-۶ تولید میکروبی متابولیست های حاصل از بی مهرگان و گیاه ۵۰
۷-خلاصةبحث ۵۵
افزایش مقیاس جداسازی محصولات طبیعی ۵۶
۲- سیستم های سنجش ۵۹
۳-توسعة تحضیر ۶۰
۱-۳ : مقیاس عملیاتی ۶۰
۲-۱-۳- : افزایش مقیاس ۶۱
۲-۳: پیشرفت در تحضیر جهت افزایش تیتر ۶۴
۱-۲-۳- توسعة محیط ۶۵
۲-۲-۳:طرح آزمایشگاه ۶۸
۳-۲-۳ : بهینه سازی شرایط تخمیر کننده : ۷۱
۴-۲-۳ :توسعة مرحلة تخم ۷۳
۴ـ اثر پردازش پایین رود ۷۴
توسعة فرآیند پایین رود ۷۶
۱-۵ – داده های اولیه ۷۶
۲-۵ – محصولات درون سلولی ۷۷
۳-۵ : تولیدات خارج سلولی ۷۸
۴-۵ : خالص سازی محصول ۸۱
۶ خلاصة بحث ۸۵
۱- دنبال کردن جداسازی محصولات طبیعی ۸۶
۲-استخراج بیشتر : ۸۷
۱-۲ : طیف شبیه uv 87
2-2: شناسایی شیمیایی ۸۸
۳-۲ : اسپکترومتری جرمی و Lc-Ms 89
4-2 : جداسازی کامل ۸۹
۵-۲ : جداسازی مانیورهای اسکوآلستاتین ۹۱
۲-افزایش بروز ژن ۹۲
۲-بیوسنتزی بلوکی ۹۵
۱-۴ : جهش یافته های بیوسنتزی ۹۵
۱-۱-۴ : جهش یافته های بیوسنتزی پرادیمیسین ۹۶
۲-۱-۴ : جهش یافته های بیوسنتزی آکاراسینومایسین ۹۶
۳-۱-۴ : آنالوگ های تریکوتسین ۹۷
۲-۴ : بازدارنده های آنزیم ۹۸
۲-بیوسنتز مستقیم ۹۸
۱-۵ :Mutasynthesis 100
2-5 : روش شناسی ۱۰۱
۲-۲-۵: تحلیل محصولات بیوسنتز مستقیم ۱۰۲
۳-۵ : بیوسنتز پیش ماده ای اسکوآلستاتین ها ۱۰۴
۱-۳-۵: روش ۱۰۶
۱-۴-۵ : A54745 110
2-4-5 : میتومایسین ها ۱۱۱
۳-۴-۵ :سیکلوسپوزین ها ۱۱۱
۴-۴-۵: آورمکتین ها ۱۱۲
۵-۴-۵: تغذیه پیش ماده های طبیعی ۱۱۲
۶-۴-۵: هالوژناسیون ۱۱۳
۶- تغییر شکل زیستی ۱۱۳
۲-۱-۶: ارگانیسم ها ۱۱۶
۳-۱-۶: شرایط تغذیه ۱۱۹
۴-۱-۶: عوامل دیگر ۱۲۲
۲-۶ : تغییر شکل زیستی اسکوآلستاتین ها ۱۲۶
تحلیل وجداسازی محصول ۱۲۷
۳-۶ – مثالهای دیگر تغییر شکل زیستی ۱۲۹
۱-۳-۶: انتی بیوتیک های آنتراسایکلین ۱۳۰
۲-۳-۶: میلبمایسین ها ۱۳۱
۷- بیوسنتز ترکیبی
۸ – سنتز ترکیبی

 
پیشگفتار :

اقیانوس ها در جهان بیش از ۷۰% سطح زمین را می پوشانند و دارای بیش از ۲۰۰۰۰۰ بی بهره و گونه های جلبکی هستند . این ارگانیسم ها در جوامع پیچیده و در ارتباط نزدیک با دیگر ارگانیسم ها زندگی می کنند . چه به صورت ارگانیسم های ماکرو ( مانند جلبک ، اسفنج ، نرم  تنان پوشش دار و یا به صورت میکرو ( مانند باکتریهای غیررشته ای ، قارچ ها و آکتینوفایست ). بعضی از ارگانیسم ها مواد شیمیایی خود را از منابع غذایی به دست ‚ی آورند اگر چه مابقی آنها ترکیبات را دوباره سنتز می کنند . بعضی از ترکیبات ی توانند توسط میکرو ارگانیسم های مربوطه تولید شوند در حالی که مابقی آنها جهت تولید به یک ارتباط بین میزبان و میکرو ارگانیسم نیاز دارند . مواد شیمیایی یک نمونة خاص می توانند تحت تأثیر زیستگاه و عوامل فصلی و جغرافیایی باشد. در حقیقت منشاء واقعی بیوژنتیکی سنتز محصولات طبیعی آبزی ـ در جامعة این محصولات یک موضوع مورد بحث است.

به علت تنوع ارگانیسم های آبزی و زیستگاهها ، تولیدات آبزی طبیعی طبقات شیمیایی زیادی را احاطه می کنند ( مانند ترین ها ) شیمیکیمات ها  ، پلی کتیو ها ، استوژنین ها ، پیتیدها، آلکالوئیدهای ساختارهای متفاوت و یک دامنه ای از ترکیبات بیوسنتز مخلوط ، در دهة گذشته به تنهایی ، ساختارهای بیش از ۵۰۰ محصول طبیعی دریایی به چاپ رسیده اند.

در بسیاری از موارد طبقة ترکیب موجود در ارگانیسم می تواند بر اساس طبقه بندی ارگانیسم منبع پیش بینی شود . متأسفانه حتی  شناخت علم به طبقة ترکیب همیشه ما را در جهت تعیین یک ساز خالص سازی هدایت نمی کند . مجموعه هایی از محصولات طبیعی آبزی می توانند دارای چندین عامل شیمیایی باشند ( مانند oso3 – Na – Oac – och3 – oh ) . هرگونه تغییر در عامل می تواند تغییر اساسی در قطبیت ترکیبات ایجاد کند بنابراین روش مورد نیاز برای خاص سازی نیز تغییر خواهد یافت . به عنوان مثال نمونه های اسفنج ته دریایی با جنس Spomhosorites دارای آبیس ( ایندول ) آلکالوئید است. تاپستین ( طرح ۱ ) ، ساده ترین ترکیب این مجموعه میتواند با کروماتوگرافی هر ژل سیلیکا با استفاده از مخلوطهای ckcl3  - Meoh به عنوان شوینده ، خالص گردد . در الگاسیدین  d ( طرح ۲ ) ک دارای یک زنجیرة جانبی . ۲- آمینو ایمیدازول است که خیلی قطبی تر است وبه کروماتوگرافی بر فاز ثابت فاز معکوس و شسشه شدن با مخلوطهای اسید استونیتریل ـ آب ـ تری فلوئرواستیک ( TFA )  نیاز دارد . دراین حالت علم به طبقة ارگانیسم می تواند  در تعیین ساختار ترکیبات خالص کمک کند ولی در تعیین روش عالص سازی برای متابولیست قطبی تر که دارای یک عاملیت شمیایی غیر منتظره است کمکی نمی کند.

به منظور دسترسی به بینشی در مورد روش هایی که بیشتر در خالص سازی محصولات طبیعی آبزی استفاده می شوند ۱۱۵ گزارش از این محصولات که در سال ۱۹۹۵ در روزنامة انجمن شمیمدانان آمریکا ، روزنامة شیمی آلی ، تتراهدرون و روزنامة محصولات طبیعی به چاپ رسیده بودند مورد بررسی قرار گرفتند . هر نشریه به طریق زیر طبقه بندی می شود:

۱-   شاخه ارگانیسم منبع .

۲-   طبقة ترکیبات شیمیایی گزارش شده.

۳-   روش حفظ ارگانیسم ( تازه / منحصر در مقابل خشک فریز کردن ) .

۴-  روش استخراج “ غیر قطبی ” حلال هایی مانند : CH2, CL2  ، هگزان ها ، استون ، ETAO 2 ، Eto2  ، تولئون ، اترنفت ؛ “ غیر قطبی و الکل ” هر یک از مواد فوق مخلوط با یک الکل ؛ “ الکل ” معمولاً اتانول ، متانول ، و یا ایزوپروپانول ؛ “ طرح پیچیده ” ؛ مانند استخراج متوالی و یا مخلوطهای غیر معمول خیلی پیچیدة حلالها با “ آبی ”  ۱۰۰% آب یا مخلوطهای آب دیگر محلولها در حالی که آب بیش از ۵۰% مخلوط را شامل باشد .

۵-    روش مورد استفادة تقسیم حلال در صورت وجود این روش ها به طبقات زیر تقسیم می شوند :

الف ـ “ ساده ” مانند یک تقسیم تک مرحله ای ( مثل یوتانول ـ آب ) و یا تقسیم دو مرحله ای مانند ETOAC ـ آب ) و به دنبال آن تقسیم بعدی فاز آبی با یوتانول.

ب) “ کوپکان ” شامل هر طرح واقعی ویا تغییر یافتة کوپکان ( Kypchan ) که در آن درصد فاز آبی به طور متوالی تنظیم می شود.

ج ) “ پیچیده ” ( کمپکس ) : شامل هر طرحی که در آن یک توالی غیر معمول حلال ها و یا مخلوطهای کمپکس غیر معمول حلال ها استفاده می شوند مانند :

مخلوطهای هیپتان : ETOA : MEOH : CHCL3  : ACOH

که در جدا سازی با تزلیوین ها استفاده می شوند.

۶-  نوع کروماتوگرافی ستون باز ، درخششی ویا ستون خلاء. این ها به ژل سیلیکا ، فازهای پیوندی ( مانند  CN,Did, C-8 DDS ) ویا نفوذ ژل بر رزین های غیر عاملی تقسیم می شوند من جمله سیستم های کروماتوگرافی تقسیم و اندازه ه مانند ( SephadenLH- 20 ، SephadenLh- 60  ، Nsbels ، Bibeadssx-20 ، Sn-8 , sn-4 ، AMBERLIT EXAD – ۲ ، XAD ، XAD- 7 ، ژل TSK- G3…S ) .

7-  نوع روش HPLC مورد استفاده در صورت وجود ـ این ها به فاز طبیعی ،‌فاز معکوس ( C-18 , C – ۸, C-4 ) دیگر فازهای پیوندی مانند : ( NH2 , CN, DIOL ) ومواردی تقسیم می شوند که در آنها ترکیباتی از مثالهای فوق استفاده گردند.

۸-   کروماتوگرافی مایع فشار میانی ( MPLc ) ، کروماتوگرافی جریان مخالف ( CCC ) ، و کروماتوگرافی لایة نازک تدارکاتی ( PILC )کدام یک استفاده می شوند.

۹-   آیا هر یک از روش های دیگر نیز استفاده می شوند ( مانند  ترم سازی و بلور سازی ، تبادل آنیون / کاتیون ، فراصافی ) .

نتایج این بررسی در جداول ۳-۱ ارائه شده اند . جدول ۱ : توزیع ترکیبات را در شاخه ها نشان می دهد.

جدول ۲ – رایج ترین روش های خالص سازی شاخه های متفاوت رانشان می دهد . جدول ۳ – رایج ترین روش های خالص سازی را  برای طبقات ترکیبات نشان می دد. تعدادی از نتایج حاصل عبارتند از :

۱-   نگهداری نمونه ها :

در ۷۷ % گزارشات مواد تازه و منجمد استخراج شدند در ۲۳ % گزارشات از ارگانیسم قبل از استخراج خشک فریز شد و یا در هوا خشک گردید.( دو نمونه ) .